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MC1000 8通道藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)
MC1000 8通道藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)

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北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司

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MC1000 8通道藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)由8個100ml藻類培養(yǎng)試管、水浴控溫系統(tǒng)、LEDs光源控制系統(tǒng)及光密度和溶解氧(選配)在線監(jiān)測系統(tǒng)等組成,可用于藻類培養(yǎng)與控制實驗、梯度對比實驗等,適于水體生態(tài)毒理學(xué)研究檢測、藻類生理生態(tài)研究、水生態(tài)研究等,其主要功能特點如下:

1. 8通道藻類培養(yǎng),每個藻類培養(yǎng)試管可培養(yǎng)85ml藻液

2. LEDs光源,可對每個培養(yǎng)試管獨立調(diào)節(jié)控制和設(shè)置光強度和時間,如晝夜變化等

3. 光密度在線監(jiān)測,包括OD680、OD720,監(jiān)測數(shù)據(jù)自動存儲

4. 溶解氧在線監(jiān)測(備選)以測量分析藻類光合作用等

5. 溫度、光照控制可用戶設(shè)置不同的程序模式

6. 氣泡混勻:可通過調(diào)節(jié)閥手動調(diào)節(jié)氣流量以對培養(yǎng)試管內(nèi)的藻類進行混勻

7. 可選配O2/CO2監(jiān)測系統(tǒng),在線監(jiān)測藻類光合放氧和CO2吸收

8. 可選配藻類熒光測量模塊

應(yīng)用領(lǐng)域:

l 多通道同步藻類培養(yǎng)

l 同步梯度脅迫實驗

l 培養(yǎng)條件優(yōu)化

l 控制培養(yǎng)條件與藻類生長動力學(xué)監(jiān)測

儀器型號:

MC 1000-OD 8個通道光源顏色相同,標(biāo)配冷白光LED

MC 1000-OD-WW8個通道光源顏色相同,標(biāo)配暖白光LED

MC 1000-OD-MULTI 8個通道光源顏色不同,分別為1)紫光405nm,2)藍紫光450nm,3)藍光470nm或冷白光,4)暖白光,5)綠光540nm6)黃橙光590nm,7)紅光640nm8)遠紅光730nm。

MC 1000-OD-MIX:每個通道可配備*多8種不同顏色的LED光源,光源顏色可由用戶定制,可選顏色為1)紫光405nm,2)藍紫光450nm,3)藍光470nm或冷白光,4)暖白光,5)綠光540nm,6)黃橙光590nm,7)紅光640nm8)遠紅光730nm。

技術(shù)指標(biāo):

1. 藻類同步培養(yǎng)通道:8

2. 培養(yǎng)管容量:100ml,建議**培養(yǎng)容量85ml

3. 在線即時監(jiān)測參數(shù):分別監(jiān)測每個培養(yǎng)管的OD680OD720,數(shù)據(jù)自動保存到主機內(nèi)存中,PIN光電二極管檢測器,665750nm帶通濾波器

4. 精確控溫范圍:標(biāo)準(zhǔn)配置高于環(huán)境溫度5-10℃(與光強有關(guān))~60℃,可選配15-60℃(環(huán)境溫度20℃,需加配制冷單元)

5. 加熱系統(tǒng):150W筒形加熱器

6. 水浴體積:5L

7. 水浴自動補水模塊(選配):水浴水位因蒸發(fā)降低后可自動補水

8. 光源系統(tǒng):全LED光源,可在0-100%范圍內(nèi)調(diào)控,每個通道的光強可分別獨立調(diào)控

1) MC 1000-OD標(biāo)配冷白光LED,可選配暖白光、紅光(635nm)或藍光(470nmLED;光強0-1000μmol/m2/s可調(diào),可升級至0-2500μmol/m2/s

2) MC 1000-OD-WW標(biāo)配暖白光LED,光強0-1000μmol/m2/s可調(diào),更高光強可定制

3) MC 1000-OD-MULTI8個通道光源顏色不同,分別為紫光405nm,藍紫光450nm,藍光470nm或冷白光,暖白光,綠光540nm,黃橙光590nm,紅光640nm,遠紅光730nm;光強0-1000μmol/m2/s可調(diào)

4) MC 1000-OD-MIX:每個通道可配備*多8種不同顏色的LED光源,光源顏色可由用戶定制,**光強可達2500μmol/m2/s

9. 控光模式:可靜態(tài)或動態(tài)設(shè)置光照程序,如正弦、晝夜節(jié)律、脈沖等

10. 控制單元顯示屏:可調(diào)控培養(yǎng)程序和顯示數(shù)據(jù)

11. 氣流調(diào)控:通過多管調(diào)節(jié)閥對8個培養(yǎng)管手動獨立調(diào)控氣體流量

12. OD測量程序:將主機內(nèi)存中的OD數(shù)據(jù)下載到電腦中并以圖表形式顯示,數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為TXTExcel文件

13. MC實時在線監(jiān)測分析模塊(含專用工作站和軟件基礎(chǔ)版或高級版,選配)

1) 同時控制2MC1000(基礎(chǔ)版)或無限臺MC1000(高級版)

2) 通過PBR軟件動態(tài)調(diào)控光照和溫度模式

3) 通過光密度(OD680、OD720)變化實時監(jiān)測藻類生物量

4) 對生長速率進行實時回歸分析

5) 多數(shù)據(jù)管理功能(過濾、查找、多重導(dǎo)出)

6) 可將測量數(shù)據(jù)、培養(yǎng)程序和其他信息保存到數(shù)據(jù)庫中

7) 通過GUI圖形用戶界面設(shè)置培養(yǎng)程序并在線顯示測量數(shù)據(jù)圖

8) 數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為CSV、ExcelXML文件

9) 支持GMS高精度氣體混合系統(tǒng)(僅限高級版)

10) 用戶自編程培養(yǎng)程序(僅限高級版)

11) 設(shè)定實驗起始時間(僅限高級版)

12) 電子郵件通知(僅限高級版)

14. GMS150高精度氣體混合系統(tǒng)(選配):可控制氣體流速和成分,標(biāo)配為控制氮氣/空氣和二氧化碳,氣源需用戶自備

15. 恒濁控制模塊(選配):帶有8個控制閥,可獨立控制8個培養(yǎng)管的濁度,由軟件自動控制

16. O2/CO2監(jiān)測系統(tǒng)(選配):8通道續(xù)批式監(jiān)測藻類CO2吸收或光合放氧通量:

1) 氧氣分析測量:氧氣測量范圍0100%,分辨率0.0001%,精確度優(yōu)于0.1%,溫度、壓力補償,數(shù)碼過濾(噪音)0-50秒可調(diào),具兩行文字?jǐn)?shù)字LCD背光顯示屏,可同時顯示氧氣含量和氣壓

2) 二氧化碳分析測量:雙波長非色散紅外技術(shù),測量范圍05%或015%兩級選擇(雙程),分辨率優(yōu)于0.0001%1ppm(可達0.1ppm),精確度1%,通過軟件溫度補償,具兩行文字?jǐn)?shù)字LCD背光顯示屏,可同時顯示CO2含量和氣壓,具數(shù)碼過濾(噪音)功能

3) 氣體抽樣與氣路切換:具備隔膜泵、氣流控制針閥和精密流量計,氣路自動定時切換功能

17. 藻類熒光測量模塊(選配):用于測量藻類熒光參數(shù)以反映藻類生理狀態(tài)及濃度,熒光測量程序包括Ft,QY,OJIP-testNPQ、光響應(yīng)曲線等,可選配探頭式測量或試管式測量:

1) 探頭式測量:具備光纖測量探頭,可插入培養(yǎng)液中原位測量藻類熒光參數(shù)

2) 試管式測量:具備測量杯,可取樣精確測量藻類熒光參數(shù)及光密度值

18. 通訊方式:USB

19. 尺寸:71×33×21 cm

20. 重量:13kg

21. 供電:110-240V

應(yīng)用案例:

不同CO2濃度下衣藻Chlamydomonas的生長曲線(Zhang,2014

聚球藻Synechococcus野生型和nblA的生長曲線(Yu,2015

產(chǎn)地:捷克

參考文獻:

1. Yu J, et al. 2015. Synechococcus elongatus UTEX 2973, a fast growing cyanobacterial chassis for biosynthesis using light and CO2. Scientific Reports 5:8132 DOI: 10.1038/srep08132

2. Grama B S, et al. 2015. Balancing photosynthesis and respiration increases microalgal biomass productivity during photoheterotrophy on glycerol. ACS Sustainable Chem. Eng.DOI: 10.1021/acssuschemeng.5b01544

3. Davis R W, et al.2015. Growth of mono- and mixed cultures of Nannochloropsis salina and Phaeodactylum tricornutum on struvite as a nutrient source. Bioresource Technology 198, 577-585

4. Patzelt D J, et al. 2015. Hydrothermal gasification of Acutodesmus obliquus for renewable energy production and nutrient recycling of microalgal mass cultures. Journal of Applied Phycology, 27(6),2239-2250

5. Patzelt D J, et al. 2015. Microalgal growth and fatty acid productivity on recovered nutrients from hydrothermal gasification of Acutodesmus obliquus. Algal Research10, 164-171

6. Flowers J M, et al. 2015. Whole-Genome Resequencing Reveals Extensive Natural Variation in the Model Green Alga Chlamydomonas reinhardti. The Plant Cell27(9), 2353-2369

7. Makower A K, et al. 2015. Transcriptomics-aided dissection of the intracellular and extracellular roles of microcystin in Microcystis aeruginosa PCC 7806. Appl. Environ. Microbiol. 81(2), 544-554

8. Vu M T T, et al. 2015. Optimization of photosynthesis, growth, and biochemical composition of the microalga Rhodomonas salinaan established diet for live feed copepods in aquaculture. Journal of Applied Phycology, doi:10.1007/s10811-015-0722-2

9. Nikolaou Aet al. 2015. A model of chlorophyll fluorescence in microalgae integrating photoproduction, photoinhibition and photoregulation. Journal of Biotechnology 19491-99. DOI: 10.1016/j.jbiotec.2014.12.00

10. Gris B, et al. 2015. Optimizing biomass and high value compound production in Cyanobacterium aponinum PCC 10605.Societa Botanica Italiana. Venezia.

11. Gérin S, et al. 2014. Modeling the dependence of respiration andphotosynthesis upon light, acetate, carbon dioxide,nitrate and ammonium in Chlamydomonasreinhardtii using design of experiments andmultiple regression. BMC Systems Biology 8, 96

12. Hasan R, et al. 2014. Bioremediation of Swine Wastewater and Biofuel Potential by using Chlorella vulgaris, Chlamydomonas reinhardtii, and Chlamydomonas debaryana.J Pet Environ Biotechnol 5:175. doi: 10.4172/2157-7463.1000175

13. ?antr??ek J, et al. 2014. Stomatal and pavement cell density linked to leaf internal CO2 concentration. Annals of Botany 114, 191-202

14. Zhang B, et al. 2014. Characterization of a Native Algae Species Chlamydomonas debaryana: Strain Selection, Bioremediation Ability, and Lipid Characterization. BioResources 9(4), 6130-6140

15. Grama B S, et al. 2014. Induction of canthaxanthin production in a Dactylococcus microalgaisolated from the Algerian Sahara. Bioresource Technology151, 297-305

16. Grama B S, et al. 2014. Characterization of fatty acid and carotenoid production in an Acutodesmus microalga isolated from the Algerian Sahara. Biomass and Bioenergy69, 265-275

17. Miazek K, et al. 2014. Growth of Chlorella in the presence of organic carbon: A photobioreactor study. Conference Process of Technics 2014 Prague

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